Nosological structure and frequency of autosomal dominant spinocerebellar ataxias associated with nucleotide repeat expansions in Russia
- Authors: Vuta E.V.1, Nazarov V.D.1, Sidorenko D.V.1, Banina D.Y.1, Lapin S.V.1, Mazing A.V.1
-
Affiliations:
- Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
- Issue: Vol 15, No 3 (2025)
- Pages: 10-21
- Section: ORIGINAL REPORTS
- Published: 24.12.2025
- URL: https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/670
- DOI: https://doi.org/10.17650/2222-8721-2025-15-3-10-21
- ID: 670
Cite item
Full Text
Abstract
Background. Expansion-based autosomal dominant spinocerebellar ataxias (ADSСA-E) represent a clinically and genetically heterogeneous group of inherited neurodegenerative disorders characterized by cerebellar atrophy. According to global population data, they account for approximately 61 % of all autosomal dominant spinocerebellar ataxias. The number of nucleotide repeats is a key determinant of penetrance, expressivity, and age of onset, necessitating precise molecular genetic analysis. Significant differences in the structure of ADSСA-E across populations underscore the need for regional studies.
Aim. Analysis of the molecular structure and frequency of ADSCA-E in a sample of Russian patients with cerebellar ataxias.
Materials and methods. DNA samples from 1272 patients with clinical signs of ataxia (2017–2024) were analyzed. The number of repeats in the ATXN1, ATXN2, ATXN3, CACNA1A, ATXN7, TBP, ATXN10, PPP2R2B, NOP56, and ATXN8OS genes was determined using fluorescent polymerase chain reaction and fragment analysis. The age at referral to the laboratory was considered an indirect marker of disease aggressiveness. Statistical analysis was performed using GraphPad Prism 10. Differences were considered statistically significant at p <0.05. Pearson’ correlation coefficient was used to calculate correlation.
Results. A pathological expansion was identified in 102 (8 %) patients. The most frequent form was spinocerebellar ataxia (SCA) type 1 (62.7 %), followed by SCA type 2 (17.6 %), SCA type 3 (5.9 %), and SCA type 6 (3.9 %); other types were rare. A case of combined SCA type 1 and SCA type 8 mutations was recorded in one patient. For SCA type 1 and SCA type 2, a significant negative correlation was established between the expansion size and the age at referral (p <0.0001; r = –0.6839 and –0.8838, respectively).
Conclusion. Data on the frequency and spectrum of ADSCA-E in the Russian Federation, including rare forms, were obtained. The prognostic significance of the repeat number was confirmed, and the necessity of molecular genetic testing, taking into account regional disease prevalence patterns, was emphasized.
Full Text
Введение
Болезни экспансий нуклеотидных повторов (БЭ) представляют собой широкий класс наследственных болезней, в основе этиопатогенеза которых лежит феномен патологического увеличения числа копий коротких тандемных повторов выше порогового значения [1]. С точки зрения молекулярно-генетических особенностей БЭ разделяют в зависимости от типа наследования (аутосомно-доминантные, аутосомно-рецессивные, Х-сцепленные), региона расположения экспансии в гене (расположение в экзоне, интроне, 5’-некодирующем регионе, 3’-некодирующем регионе), мотива повторов (три-, тетра-, пента- и гексануклеотидные повторы), а также при расположении экспансии в кодирующей области гена на полиглутаминовые, полиаланиновые и полиглициновые БЭ [2]. В настоящее время известно >50 БЭ, большинство из которых характеризуются поражением центральной нервной системы [2].
Аутосомно-доминантные спиноцеребеллярные атаксии (АДСЦА) – группа наследственных нейродегенеративных болезней, характеризующихся дегенерацией мозжечка с развитием соответствующей симптоматики, которая может сопровождаться рядом других специфических для отдельных АДСЦА проявлений: полинейропатией, атрофией сетчатки, дистонией, судорогами и т. д. Вариабельность фенотипа и возраста дебюта, как правило, не позволяет заподозрить конкретный тип АДСЦА на основании клинической картины, требуя обязательной верификации методом молекулярно-генетического тестирования. Распространенность заболеваний данной группы варьирует в зависимости от региона и типа АДСЦА и составляет 1–5 случаев на 100 тыс. населения [3]. К числу АДСЦА, ассоциированных с экспансией повторов (АДСЦА-Э), относятся по меньшей мере 12 типов: 1, 2, 3, 4, 6, 7, 8, 10, 12, 17, 27B и 36, причем СЦА 1, 2, 3, 6, 7 и 17-го типов являются классическими полиглутаминовыми заболеваниями, обусловленными экспансией CAG-повторов [4]. АДСЦА занимают значительное место в клиническом спектре спиноцеребеллярных атаксий (СЦА). Согласно популяционным данным, примерно 30 % всех случаев СЦА являются наследственными, при этом >90 % наследственных атаксий обусловлены АДСЦА [5]. Из них около 61,0–61,5 % составляют АДСЦА-Э, что подчеркивает их ключевую роль в структуре наследственных атаксий с доминантным типом наследования [5, 6].
Полиглутаминовые АДСЦА характеризуются схожим профилем поражения центральной нервной системы, механизмы которого до сих пор до конца не изучены. Несмотря на то что при полиглутаминовых АДСЦА экспансии появляются в разных генах (ATXN1, ATXN2, ATXN3, CACNA1A, ATXN7, TBP), в основе патогенеза лежат 3 ключевых механизма:
- Механизм приобретения белком дополнительной функции (gain of function), при котором экспансия усиливает или изменяет нормальную функцию белка [7, 8]. Трансляция полиглутаминового участка вызывает комплекс патологических изменений: митохондриальную дисфункцию, эксайтотоксичность, нарушения работы кальциевых каналов, митофагии и аксонального транспорта [1, 9–12], а также приводит к нарушению деградации неправильно свернутых белков, образованию цитотоксичных естественных антисмысловых транскриптов (NAT), формирующих РНК-очаги, и транскрипционным нарушениям [13–19].
- Механизм снижения функции кодируемого белка (механизм “loss of function”), который описан для СЦА 1-го и 6-го типа [20–25].
- Накопление белковых агрегатов, формирующихся из компонентов протеасом, цитоскелета, транскрипционных факторов и аберрантных белков вследствие изменений конформационных свойств и кросс-бета-олигомеризации последних, – характерный признак полиглутаминовых болезней [2, 26, 27]. Роль агрегатов остается дискуссионной: с одной стороны, они могут проявлять нейропротекторный эффект, секвестрируя токсичные олигомеры, с другой – нарушать ключевые клеточные процессы: транскрипцию, аксональный транспорт, глутаматергическую передачу и работу убиквитин-протеасомной системы [28–42].
Для типов АДСЦА с экспансией в нетранслируемых областях (5’-нетранслируемых областях, интронах или 3’-нетранслируемых областях) характерны такие механизмы, как мРНК-токсичность (связывание РНК-связывающих белков (CUGBP1, ETR3, MBNL) и развитие сплайсопатии) и RAN-трансляция с образованием токсичных белковых агрегатов [1, 29, 43–49]. Кроме того, экспансии, особенно в 5’-нетранслируемых областях, могут изменять экспрессию генов за счет метилирования и других эпигенетических изменений [50].
Для БЭ характерен ряд молекулярно-генетических особенностей [1, 51]. У многих БЭ тяжесть проявлений прямо коррелирует с количеством повторов, а возраст манифестации находится в обратной зависимости от размера экспансии. Такая корреляция характерна для АДСЦА 1, 2, 3, 6 и 7-го типа, что, вероятно, связано с повышением склонности аберрантных белков к формированию крупных белковых агрегатов при увеличении размера экспансии [7, 52, 53]. Пенетрантность и экспрессивность АДСЦА-Э зависят от размера экспансии и наличия прерываний в экспансионной последовательности [43–45]. Показано, что прерывания (например, вставки CAT в CAG-повторах) могут повышать стабильность аллеля и смещать порог патогенности [46–49]. Так, для СЦА 1-го типа классическим порогом манифестации считается наличие 39 CAG-повторов, однако при наличии прерывающих элементов атаксия может не проявиться даже при большем числе повторов [54]. Однако при СЦА 8-го типа, для которой характерна сниженная пенетрантность вне зависимости от количества повторов, прерывания, наоборот, увеличивают пенетрантность [55]. Данные результаты подчеркивают значение детального молекулярного анализа не только числа, но и состава повторов при интерпретации генетических данных и прогнозировании течения болезни.
Для АДСЦА, несмотря на наличие симптомов мозжечковой недостаточности, характерна крайне выраженная фенотипическая вариабельность и возраста манифестации болезни, а также скорости прогрессирования болезни, что делает невозможным определение типа АДСЦА только по клинической картине. Лишь применение методов генетического анализа позволяет определить тип СЦА у пациента.
Исследование встречаемости АДСЦА-Э в Российской Федерации является крайне актуальной неврологической задачей, что связано с возможными особенностями представленности отдельных АДСЦА в общей структуре данной группы болезней, особенностями корреляции числа повторов с манифестацией данных состояний и возможными региональными особенностями распределения различных типов АДСЦА. Проведенные оригинальные исследования посвящены проблемам АДСЦА на ограниченных выборках больных в российской популяции [56–61].
Цель исследования – анализ молекулярной структуры и частоты отдельных форм АДСЦА-Э в выборке российских пациентов с мозжечковыми атаксиями.
Материалы и методы
В исследовании участвовали 1272 пациента с направительным диагнозом мозжечковой атаксии, обследованные в период с января 2017 г. по ноябрь 2024 г. в лаборатории молекулярной диагностики научно-методического центра Минздрава России по молекулярной медицине Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета им. акад. И. П. Павлова; 920 пациентов были обследованы на АДСЦА 1, 2, 3, 6 и 7-го типа, 243 пациента – на АДСЦА 8, 10, 12, 36 и 17-го типа. На все изучаемые в работе АДСЦА (1, 2, 3, 6, 7, 8, 10, 12, 17 и 36-го типа) были обследованы 147 пациентов.
Из 1272 пациентов пол был известен у 1206, а возраст – у 1033 (табл. 1).
Таблица 1. Эпидемиологические данные пациентов
Table 1. Epidemiological data of patients
Показатель Parameter | Значение Value | |
Пол, n Sex, n n = 1206 | Мужской Male | 576 |
Женский Female | 630 | |
Возраст обращения в лабораторию, лет Age at referral to the laboratory, years n = 1033 | Min | 1 |
Me | 49 | |
Max | 93 | |
Примечание. Min – минимальный зарегистрированный возраст; Max – максимальный зарегистрированный возраст; Me – медиана. Note. Min – minimum recorded age; Max – maximum recorded age; Me – median. | ||
Определение количества повторов в генах ATXN1, ATXN2, ATXN3, CACNA1А, ATXN7, TBP, ATXN10, PPP2R2B, NOP56, ATXN8OS проводилось с помощью метода полимеразной цепной реакции с праймингом нуклеотидных повторов с использованием флуоресцирующих меток и последующим фрагментным анализом (генетический анализатор «Нанофор», Россия). Последовательность праймеров и условия реакции могут быть предоставлены по запросу. Для генов ATXN1, ATXN2, ATXN3, CACNA1А, ATXN7, TBP было проведено точное определение количества повторов. Для генов ATXN10, PPP2R2B, NOP56, ATXN8OS оценивалось наличие экспансии без точной оценки количества повторов. Последовательности праймеров, условия реакции и формулы расчета точного количества нуклеотидных повторов могут быть предоставлены по запросу. Результаты количества повторов для генов ATXN1, ATXN2, ATXN3, CACNA1А, ATXN7, TBP оценивались по критериям нормы (табл. 2) европейских рекомендаций по лечению и диагностике атаксий от 2016 г. [62].
Таблица 2. Критерии нормы для спиноцеребеллярных атаксий, связанных с экспансией повторов
Table 2. Reference criteria for spinocerebellar ataxias associated with repeat expansions
Тип СЦА / ген SCA type / gene | Количество повторов Number of repeats | Интерпретация Interpretation |
СЦА1 / ATXN1 SCA1 / ATXN1 | 6–35 | Норма Normal |
36–38 | Промежуточные повторы. Увеличен риск развития у потомства Intermediate repeats. Increased risk of disease in offspring | |
39–83 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
СЦА2 / ATXN2 SCA2 / ATXN2 | 14–26 | Норма Normal |
27–32 | Промежуточные повторы. Увеличен риск развития у потомства Intermediate repeats. Increased risk of disease in offspring | |
33–500 | Диагноз подтвержден Diagnosis confirmed | |
СЦА3 / ATXN3 SCA3 / ATXN3 | 12–44 | Норма Normal |
45–59 | Промежуточные повторы. Увеличен риск развития у потомства Intermediate repeats. Increased risk of disease in offspring | |
>59 | Диагноз подтвержден Diagnosis confirmed | |
СЦА6 / CACN1a SCA6 / CACNA1a | 4–18 | Норма Normal |
19 | Промежуточные повторы Intermediate repeats | |
20–33 | Диагноз подтвержден Diagnosis confirmed | |
СЦА7 / ATXN7 SCA7 / ATXN7 | 3–27 | Норма Normal |
28–33 | Промежуточные повторы. Повышен риск развития у потомства Intermediate repeats. Increased risk of disease in offspring | |
34–36 | Диагноз подтвержден. Неполная пенетрантность, аномальная симптоматика Diagnosis confirmed. Reduced penetrance, atypical symptoms | |
37–460 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
СЦА17 / TBP SCA17 / TBP | 25–40 | Норма Normal |
41–48 | Диагноз подтвержден. Неполная пенетрантность Diagnosis confirmed. Reduced penetrance | |
49–66 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
СЦА10 / ATXN10 SCA10 / ATXN10 | 8–32 | Норма Normal |
33–799 | Диагноз подтвержден. Неполная пенетрантность Diagnosis confirmed. Reduced penetrance | |
800–4500 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
СЦА8 / ATXN8OS SCA8 / ATXN8OS | 15–50 | Норма Normal |
51–70 | Промежуточные повторы с неизвестным клиническим значением Intermediate repeats of unknown clinical significance | |
71–1300 | Диагноз подтвержден. Неполная пенетрантность вне зависимости от размера экспансии Diagnosis confirmed. Reduced penetrance regardless of expansion size | |
СЦА 36 / NOP 56 SCA36 / NOP56 | 3–14 | Норма Normal |
15–649 | Промежуточные повторы с неизвестным клиническим значением Intermediate repeats of unknown clinical significance | |
>650 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
СЦА12 / PPP2R2B SCA12 / PPP2R2B | 4–32 | Норма Normal |
33–42 | Промежуточные повторы с неизвестным клиническим значением Intermediate repeats of unknown clinical significance | |
43–78 | Диагноз подтвержден. Полная пенетрантность Diagnosis confirmed. Full penetrance | |
Примечание. Здесь и в табл. 3 и 4: СЦА – спиноцеребеллярная атаксия. Note. Here and in the tables 3 and 4: SCA – spinocerebellar ataxia. | ||
Для оценки возраста манифестации АДСЦА-Э рассчитывался непрямой параметр агрессивности данных заболеваний – возраст молекулярно-генетического подтверждения. Определение точного возраста манифестации болезни затруднено в связи с неспецифическими первичными проявлениями заболевания, а также с трудностями сбора анамнеза у данных пациентов. Молекулярно-генетическая диагностика является «золотым стандартом» подтверждения диагноза СЦА. Работ, посвященных оценке времени от манифестации до молекулярно-генетического диагноза АДСЦА, крайне мало [63], однако опыт исследований другого полиглутаминового экспансионного заболевания, болезни Гентингтона, подтверждает рациональность и объективность использования возраста молекулярно-генетического подтверждения как маркера агрессивности и тяжести СЦА [64, 65].
Статистическая обработка проведена с использованием программы GraphPad Prism 10 (GraphPad Software Inc., США). Статистически значимыми считались различия при p <0,05. Для расчета корреляции была использована формула корреляции Пирсона.
Результаты
Патологическая экспансия в 1 гене подтвердилась в 8 % (n = 102) случаев от общего числа обследованных больных. Также был выявлен 1 пациент с экспансией в 2 генах: ATXN1 и ATXN8 / ATXN8OS. Всего молекулярно-генетический диагноз СЦА подтвержден у 103 пациентов.
Чаще всего была диагностирована СЦА 1-го типа – 61,8 % всех подтвержденных случаев. Следующими по распространенности были СЦА 2-го типа (17,6 %), СЦА 3-го типа (5,9 %), СЦА 6-го типа (3,9 %). Другие типы встречались в единичных случаях. В исследованной выборке не выявлено АДСЦА 10 и 12-го типа (табл. 3).
Таблица 3. Эпидемиологическая характеристика разных типов спиноцеребеллярной атаксии
Table 3. Epidemiological characteristics of different spinocerebellar ataxia types
Тип СЦА SCA type | Число пациентов, n Number of patients, n | Число положительных случаев, n Number of positive cases, n | Доля положительных случаев, % Percentage of positive cases, % | Распределение типов СЦА, % (n = 102) Distribution of SCA types, % (n = 102) |
СЦА1 SCA1 | 940 | 63 | 6,7 | 61,8 |
СЦА2 SCA2 | 937 | 18 | 1,9 | 17,6 |
СЦА3 SCA3 | 934 | 6 | 0,6 | 5,9 |
СЦА6 SCA6 | 937 | 4 | 0,4 | 3,9 |
СЦА7 SCA7 | 930 | 1 | 0,1 | 1,0 |
СЦА8 SCA8 | 251 | 6 | 2,4 | 5,9 |
СЦА10 SCA10 | 252 | 0 | 0 | 0 |
СЦА12 SCA12 | 247 | 0 | 0 | 0 |
СЦА36 SCA36 | 248 | 2 | 0,8 | 2,0 |
СЦА17 SCA17 | 447 | 2 | 0,4 | 2,0 |
Всего Total | 1272 | 102 | 8 | 100 |
Была проведена оценка распределения размеров экспансионных аллелей для СЦА 1, 2, 3, 6, 7 и 17-го типа (рис. 1). При СЦА 1-го типа самым часто встречающимся является аллель с 46 CAG-повторами (11 %), который демонстрирует незначительное преобладание над другими аллельными вариантами. Частотное распределение аллелей при СЦА 2-го типа характеризуется явным превалированием аллеля с 39 CAG-повторами (29 %). При СЦА 3-го типа преобладает аллель с 73 CAG-повторами (60 %). У других форм АДСЦА не было выявлено превалирующего аллеля.
Рис. 1. Частотное распределение аллелей при спиноцеребеллярной атаксии 1-го типа (а), 2-го типа (б) и 3-го типа (в)
Fig. 1. Allele frequency distribution in spinocerebellar ataxia type 1 (а), spinocerebellar ataxia type 2 (б), and spinocerebellar ataxia type 3 (в)
Из группы с подтвержденными СЦА пол был известен для 98 обследуемых, а возраст обращения в лабораторию – для 83 (табл. 4).
Таблица 4. Демографические данные пациентов с подтвержденной спиноцеребеллярной атаксией
Table 4. Demographic data of patients with confirmed spinocerebellar ataxia
Тип СЦА SCA type | Пол, n Sex, n n = 98 | Возраст обращения в лабораторию, лет Age at referral to the laboratory, years n = 83 | ||||
М | Ж F | N | Min | Me | Max | |
СЦА1 SCA1 | 22 | 41 | 63 | 9 | 42,5 | 75 |
СЦА2 SCA2 | 6 | 11 | 17 | 25 | 40,2 | 66 |
СЦА3 SCA3 | 0 | 3 | 3 | 17 | 34,8 | 55 |
СЦА6 SCA6 | 0 | 4 | 4 | 37 | 50,0 | 66 |
СЦА7 SCA7 | 1 | 0 | 1 | 24 | 24,0 | 24 |
СЦА8 SCA8 | 1 | 6 | 7 | 21 | 45,3 | 56 |
СЦА10 SCA10 | 0 | 0 | 0 | Патологические варианты не выявлены No pathogenic variants detected | ||
СЦА12 SCA12 | 0 | 0 | 0 | Патологические варианты не выявлены No pathogenic variants detected | ||
СЦА17 SCA17 | 2 | 0 | 2 | 47 | 47 | 47 |
СЦА36 SCA36 | 0 | 2 | 2 | 50 | 55 | 60 |
Примечание. М – мужчины; Ж – женщины; Min – минимальный зарегистрированный возраст; Max – максимальный зарегистрированный возраст; Me – медиана. Note. M – males; F – females; Min – minimum recorded age; Max – maximum recorded age; Me – median. | ||||||
Был проведен корреляционный анализ связи между количеством повторов и возрастом обращения в лабораторию для аллелей при СЦА 1, 2 и 3-го типа. При исследовании связи между количеством CAG-повторов и возрастом обращения в лабораторию обнаружена статистически значимая обратная корреляция при СЦА 1-го типа (r = –0,683, p <0,0001) и СЦА 2-го типа (r = –0,8838, p <0,0001) (рис. 2).
Рис. 2. Корреляция возраста молекулярно-генетического подтверждения и количества CAG-повторов при спиноцеребеллярной атаксии 1-го типа (а) и 2-го типа (б)
Fig. 2. Correlation between the age at molecular genetic confirmation and the number of CAG repeats in spinocerebellar ataxia type 1 (a) and type 2 (б)
Обсуждение
Экспансионные заболевания представляют собой крайне гетерогенную группу наследственных состояний, которые чаще всего связаны с вовлечением в патологический процесс центральной нервной системы и развитием нейродегенеративных процессов. В свою очередь, АДСЦА относятся к широкой группе нейродегенеративных болезней, характеризующихся поражением мозжечка, при которых экспансии являются наиболее частой этиологической причиной развития патологического процесса. В последнее время возрос интерес к экспансионным заболеваниям и молекулярно-генетическим особенностям наследственных атаксий, с динамическими мутациями в частности.
Среди всех обследованных пациентов с симптомами мозжечковой атаксии общая распространенность исследованных АДСЦА-Э составила 8 %. В работе W. Y. Lee и соавт. (2003) распространенность АДСЦА-Э у пациентов с прогрессирующей мозжечковой атаксией (n = 253) составила 20,6 % [66]. В исследовании Y. Zhao и соавт. (2002) распространенность СЦА у пациентов (n = 204) составила 28,4 % [24]. Частота патологических аллелей в европейской популяции в работе S. L. Gardiner и соавт. (2019) составила 1,3 % [54]. Разница в зарегистрированной распространенности АДСЦА-Э между исследованиями может быть связана с гетерогенностью критериев формирования выборки и этнической спецификой популяций.
В данном исследовании был выявлен случай сосуществования СЦА 1-го и 8-го типа. Аналогичное описание пациента 56 лет, унаследовавшего экспансию в гене ATXN8OS от клинически бессимптомной матери, а экспансию ATXN1 – от отца с установленным диагнозом СЦА 1-го типа, представлено R. H. Roda и соавт. (2017) [67]. Течение болезни у пробанда соответствовало фенотипу СЦА1-го типа и не имело отличительных черт. Таким образом, СЦА 8-го типа из-за неполной пенетрантности может не оказывать значительного влияния на фенотип, и патогенность экспансии будет зависеть от наличия экспансий в других генах, что следует учитывать при генетическом консультировании. A. Sulek и соавт. (2003) описали несколько случаев сочетания СЦА 1-го и 8-го типа [68], при которых экспансия в гене ATXN8OS также не влияла на фенотип болезни. Y. Izumi и соавт. (2003) наблюдали сосуществование СЦА 6-го и 8-го типа и предположили, что экспансия в гене ATXN8OS может влиять на функцию гена CACNA1A, что приводит к развитию мозжечковой атаксии, особенно у гомозиготных пациентов [69]. Эти данные подчеркивают важность всестороннего молекулярно-генетического обследования при подозрении на АДСЦА-Э, особенно в случаях с нетипичной клинической картиной или вариабельным возрастом дебюта. Комплексный подход к молекулярной диагностике позволяет более точно установить клинически значимые мутации и уточнить прогноз заболевания.
Анализ структуры пациентов с подтвержденными АДСЦА-Э (n = 102) в настоящем исследовании показал значительное преобладание СЦА 1-го типа, на долю которой пришлось 61,8 % всех молекулярно-генетически подтвержденных случаев. На 2-м месте по частоте находилась СЦА 2-го типа (17,6 %), что соответствует результатам исследований, проведенных ранее [56, 60]. На 3-м месте в исследуемой выборке оказалась СЦА 8-го типа (5,9 %), что значительно превышает данные некоторых российских исследований. Согласно результатам E. P. Nuzhnyi и соавт. (2022), доля СЦА 8-го типа составляла лишь 1,5 % – 5-е место среди всех АДСЦА [60]. Высокая доля СЦА 8-го типа в настоящем исследовании может быть обусловлена географическим фактором – близостью Санкт-Петербурга к Финляндии, где, по данным V. Juvonen и соавт. (2000), СЦА 8-го типа составляет до 16 % всех случаев АДСЦА [70]. Следующими по частоте в исследуемой выборке являлись СЦА 3-го типа (5,9 %), 6-го типа (3,9 %), 17-го типа (2 %), 36-го типа (2 %) и 7-го типа (1 %). Результаты по СЦА 3, 7 и 17-го типа частично соответствуют данным, полученным S. A. Klyushnikov и соавт. (2022), согласно которым распространенность СЦА 3-го типа составила 8,03 %, СЦА 7-го типа – 0,73 %, СЦА 17-го типа – 4,38 % [56]. Однако полученные нами данные о распространенности СЦА 6-го типа и факт выявления случаев СЦА 36-го типа существенно расходятся с ранее опубликованными результатами, согласно которым частота СЦА 6-го типа в российской популяции не превышала 1 %, а случаи СЦА 36-го типа, по имеющимся данным литературы, являются одними из первых описанных на территории Российской Федерации. В исследовании Э. З. Мингазовой (2009), проведенном в Республике Башкортостан, доля СЦА 1-го типа составила 4,5 %, что существенно меньше полученных в данной работе результатов, доля СЦА 6-го типа – 9,1 %, а генетические формы СЦА 2, 3, 12, и 17-го типа не были обнаружены [71].
Структура АДСЦА-Э в российской популяции существенно отличается от таковой в странах Европы и Северной Америки. В соответствии с международными исследованиями СЦА 3-го типа, или болезнь Мачадо–Джозефа, считается самой распространенной формой, составляя 20–50 % всех случаев АДСЦА. Далее следуют СЦА 2-го и 6-го типа [72]. Однако относительная частота различных форм АДСЦА варьирует в зависимости от географического региона. Так, СЦА 3-го типа наиболее распространена в Португалии, особенно на Азорских островах (до 74 % всех семей с СЦА), где на острове Флориш заболеваемость достигает 1 случая на 239 человек [73]. СЦА 1-го типа занимает лидирующие позиции в Польше (68 % всех случаев), а также распространена в Южной Африке (41 %), Сербии (34 %), Италии (25 %) и Индии (22 %) [9]. Напротив, в Европе и Северной Америке доля СЦА 1-го типа значительно ниже – от 3 до 16 % [74]. СЦА 2-го типа преобладает в Мексике (43 %), Южной Корее (31 %), а также распространена в Индии, Италии и Испании (15–27 %), при этом крайне редко встречается в Японии (5 %) [75]. Распространенность СЦА 36-го типа составляет 1,9 % всех французских семей с СЦА и 1,5 % всех японских семей с СЦА, но данная форма отсутствует у пациентов из Германии [8]. Такая выраженная популяционная вариативность частоты различных форм АДСЦА может быть объяснена эффектом основателя, а также молекулярно-генетическими и этногеографическими особенностями отдельных регионов.
При анализе частотного распределения CAG-повторов при СЦА 1-го типа продемонстрировано преобладание 46-го аллеля. Полученные данные не согласуются с результатами, ранее представленными в европейских популяционных исследованиях. Так, в работе S. Nethisinghe и соавт. (2018) (британская когорта) наибольшую частоту имел аллель с 39 CAG-повторами, тогда как вторым по распространенности был аллель с 52 CAG-повторами [76]. Выявленные различия, вероятно, обусловлены эпидемиологическими особенностями выборок: возможно, средний возраст манифестации заболевания в британской когорте выше, что может объяснять преобладание аллелей с меньшим числом повторов. Возможны технические расхождения в методах определения числа CAG-повторов. Так, S. Nethisinghe и соавт. (2018) указывают потенциальную погрешность измерений в пределах ±7 повторов. При учете данной ошибки наиболее распространенный аллель британской выборки может соответствовать наиболее частому аллелю в настоящем исследовании (46 CAG-повторов). Такие расхождения могут быть обусловлены и молекулярно-генетическими особенностями различных популяций, в том числе российской. В исследовании D. Kumaran и соавт. (2014), проведенном на южноиндийской когорте, наиболее часто встречался аллель с 44 CAG-повторами [42], что согласуется с текущим исследованием.
При СЦА 2-го типа частотное распределение аллелей характеризуется преобладанием аллелей с 39 CAG-повторами. Данные результаты коррелируют с представленными ранее работами. Согласно исследованию S.-M. Pulst и соавт. (2005), наибольшую частоту имеют аллели с 37–39 CAG-повторами [25]. Данные P. Giunti и соавт. (1998), основанные на анализе 89 британских семей с фенотипом, характерным для СЦА 2-го типа, демонстрируют преобладание аллеля с 41 CAG-повтором [77]. Такая разница, вероятнее всего, связана с методом определения количества повторов и возможной погрешностью.
Для СЦА 3-го типа в настоящем исследовании наибольшая частота зафиксирована у аллелей с 73 CAG-повторами, что соответствует некоторым исследованиям. У бразильских пациентов португальского происхождения в исследовании G. Stevanin и соавт. (1995) наиболее распространенным оказался аллель с 74 повторами, а вторым по частоте – с 72 повторами [78]. В кубинской когорте в исследовании Y. González-Zaldívar и соавт. (2015) чаще всего встречался аллель с 68 CAG-повторами [79].
Кроме того, в ходе работы была подтверждена обратная корреляционная связь между возрастом молекулярно-генетического подтверждения и числом CAG-повторов. Для СЦА 1-го типа была выявлена сильная обратная корреляция (r = –0,683; p <0,0001), что согласуется с ранними данными, в частности с результатами L. P. Ranum и соавт. (1994) (r = –0,8145), а также S. Nethisinghe и соавт. (2018) (r = –0,7751) [76, 80]. L. G. Goldfarb и соавт. (2019), помимо корреляционных связей между возрастом начала болезни и размером экспансии, также установили, что с увеличением количества CAG-повторов увеличивается частота жизнеугрожающих симптомов, таких как дисфагия и атрофия скелетных мышц [58]. Обратная корреляция была установлена и для СЦА 2-го типа (r = –0,8838; p <0,0001), что подтверждается данными P. Giunti и соавт. (1998), а также результатами, полученными в исследовании S.-M. Pulst и соавт. (2005) [25, 77]. K. P. Figueroa и соавт. (2017) также установили, что помимо размера экспансии CAG-повтора на возраст манифестации болезни, по всей видимости, влияет наличие рецессивных модифицирующих аллелей [7]. Таким образом, полученные данные подтверждают наличие зависимости между тяжестью клинической картины и размером полиглутаминового участка. Это подчеркивает значение молекулярно-генетического анализа как инструмента прогнозирования тяжести заболевания.
Выводы
В данной работе была проанализирована крупная выборка пациентов с клиническими признаками СЦА, что позволило установить частоту различных типов АДСЦА-Э на территории Российской Федерации, включая редкие формы. Одним из первых на территории Российской Федерации был выявлен случай СЦА 36-го типа. АДСЦА-Э характеризуются значительным молекулярно-генетическим и клиническим разнообразием. Особый интерес представляет выявленная в данной работе сильная обратная корреляция между количеством CAG-повторов и возрастом обращения в лабораторию, что может служить косвенным маркером агрессивности заболевания. Кроме того, случай сочетания мутаций СЦА 1-го и 8-го типа у одного пациента демонстрирует сложность фенотипической картины при множественных экспансиях и подчеркивает важность комплексного молекулярно-генетического анализа как в диагностике, так и в оценке наследственного риска. Таким образом, результаты работы подчеркивают значимость молекулярно-генетического тестирования как ключевого инструмента в диагностике, стратификации и прогнозировании АДСЦА-Э, особенно в условиях их широкой генетической гетерогенности и ограниченной изученности в популяциях Российской Федерации.
About the authors
Elizaveta V. Vuta
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Author for correspondence.
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0009-0003-7386-7270
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022V. D. Nazarov
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9354-8790
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022D. V. Sidorenko
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8503-0759
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022D. Yu. Banina
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0009-0001-1705-7674
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022S. V. Lapin
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4998-3699
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022A. V. Mazing
Pavlov First Saint Petersburg State Medical University, Ministry of Health of Russia
Email: vuta.elizaveta@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3055-6507
Scientific and Methodological Center of the Ministry of Health of Russia for Molecular Medicine
Russian Federation, 6–8 Lva Tolstogo St., Saint Petersburg 197022References
- Illarioshkin S.N., Ivanova-Smolenskaya I.A., Markova E.D. A new mechanism of mutation in humans: trinucleotide repeat expansion. Genetika = Genetics 1995;(11):1478–82. (In Russ.).
- Cummings C.J., Mancini M.A., Antalffy B. et al. Chaperone suppression of aggregation and altered subcellular proteasome localization imply protein misfolding in SCA1. Nat Genet 1998;19(2):148–54. doi: 10.1038/502
- Ruano L., Melo C., Silva M.C. et al. The global epidemiology of hereditary ataxia and spastic paraplegia: a systematic review of prevalence studies. Neuroepidemiology 2014;42(3):174–83. doi: 10.1159/000358801
- Duyao M., Ambrose C., Myers R. et al. Trinucleotide repeat length instability and age of onset in Huntington’s disease. Nat Genet 1993;4(4):387–92. doi: 10.1038/ng0893-387
- Mizushima K., Shibata Y., Shirai S. et al. Prevalence of repeat expansions causing autosomal dominant spinocerebellar ataxias in Hokkaido, the northernmost island of Japan. J Hum Genet 2024;69(1):27–31. doi: 10.1038/s10038-023-01200-x
- Moseley M.L., Benzow K.A., Schut L.J. et al. Incidence of dominant spinocerebellar and Friedreich triplet repeats among 361 ataxia families. Neurology 1998;51(6):1666–71. doi: 10.1212/WNL.51.6.1666
- Figueroa K.P., Coon H., Santos N. et al. Genetic analysis of age at onset variation in spinocerebellar ataxia type 2. Neurol Genet 2017;3(3):e155. doi: 10.1212/NXG.0000000000000155
- Obayashi M., Stevanin G., Synofzik M. et al. Spinocerebellar ataxia type 36 exists in diverse populations and can be caused by a short hexanucleotide GGCCTG repeat expansion. J Neurol Neurosurg Psychiatry 2015;86(9):986–95. doi: 10.1136/jnnp-2014-309153
- Klockgether T., Mariotti C., Paulson H.L. Spinocerebellar ataxia. Nat Rev Dis Primers 2019;5(1):24. doi: 10.1038/s41572-019-0074-3
- Liu W., Ikeda Y., Nishizawa M. et al. Characteristic RNA foci of the abnormal hexanucleotide GGCCUG repeat expansion in spinocerebellar ataxia type 36 (Asidan). Eur J Neurol 2014;21(10):1377–86. doi: 10.1111/ene.12497
- Panov A.V., Gutekunst C.A., Leavitt B.R. et al. Early mitochondrial calcium defects in Huntington’s disease are a direct effect of polyglutamines. Nat Neurosci 2002;5(8):731–6. doi: 10.1038/nn884
- Vohra A., Keefe P., Puthanveetil P. Altered metabolic signaling and potential therapies in polyglutamine diseases. Metabolites 2024;14(6):320. doi: 10.3390/metabo14060320
- Ashkenazi A., Bento C.F., Ricketts T. et al. Polyglutamine tracts regulate beclin 1-dependent autophagy. Nature 2017;545(7652):108–11. doi: 10.1038/nature22078
- Paulson H.L., Perez M.K., Trottier Y. et al. Intranuclear inclusions of expanded polyglutamine protein in spinocerebellar ataxia type 3. Neuron 1997;19(2):333–44. doi: 10.1016/S0896-6273(00)80942-6
- Chai Y., Koppenhafer S.L., Bonini N.M. et al. Evidence for proteasome involvement in polyglutamine disease: localization to nuclear inclusions in SCA3/MJD and suppression of polyglutamine aggregation in vitro. Hum Mol Genet 1999;8(4):673–82. doi: 10.1093/hmg/8.4.673
- Szebenyi G., Morfini G.A., Babcock A. et al. Neuropathogenic forms of huntingtin and androgen receptor inhibit fast axonal transport. Neuron 2003;40(1):41–52. doi: 10.1016/S0896-6273(03)00560-2
- Li P.P., Sun X., Xia G. et al. ATXN2-AS, a gene antisense to ATXN2, is associated with spinocerebellar ataxia type 2 and amyotrophic lateral sclerosis. Ann Neurol 2016;80(5):600–15. doi: 10.1002/ana.24761
- Paul S., Dansithong W., Figueroa K.P. et al. Staufen1 links RNA stress granules and autophagy in a model of neurodegeneration. Nat Commun 2018;9:3648. doi: 10.1038/s41467-018-06041-3. PMID: 30232329.
- Friedman M.J., Shah A.G., Fang Z.H. et al. Polyglutamine domain modulates the TBP–TFIIB interaction: implications for its normal function and neurodegeneration. Nat Neurosci 2007;10(12):1519–28. doi: 10.1038/nn2011
- Bowman A.B., Lam Y.C., Jafar-Nejad P. et al. Duplication of Atxn1l suppresses SCA1 neuropathology by decreasing incorporation of polyglutamine-expanded ataxin-1 into native complexes. Nat Genet 2007;39(3):373–9. doi: 10.1038/ng1985
- Dansithong W., Paul S., Figueroa K.P. et al. Ataxin-2 regulates RGS8 translation in a new BAC-SCA2 transgenic mouse model. PLoS Genet 2015;11(4):e1005182. doi: 10.1371/journal.pgen.1005182
- Saitoh O., Masuho I., Itoh M. et al. Distribution of regulator of G protein signaling 8 (RGS8) protein in the cerebellum. Cerebellum 2003;2(2):154–60. doi: 10.1080/14734220309409
- Liu J., Tang T.S., Tu H. et al. Deranged calcium signaling and neurodegeneration in spinocerebellar ataxia type 2. J Neurosci 2009;29(29):9148–62. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0660-09.2009
- Zhao Y., Tan E.K., Law H.Y. et al. Prevalence and ethnic differences of autosomal-dominant cerebellar ataxia in Singapore. Clin Genet 2002;62(6):478–81. doi: 10.1034/j.1399-0004.2002.620610.x
- Pulst S.M., Santos N., Wang D. et al. Spinocerebellar ataxia type 2: polyQ repeat variation in the CACNA1A calcium channel modifies age of onset. Brain 2005;128(10):2297–303. doi: 10.1093/brain/awh590
- Killoran A., Biglan K.M., Jankovic J. et al. Characterization of the Huntington intermediate CAG repeat expansion phenotype in PHAROS. Neurology 2013;80(22):2022–7. doi: 10.1212/WNL.0b013e318294b290
- Steffan J.S., Kazantsev A., Spasic-Boskovic O. et al. The Huntington’s disease protein interacts with p53 and CREB-binding protein and represses transcription. Proc Natl Acad Sci USA 2000;97(12):6763–8. doi: 10.1073/pnas.100110097
- Yu Z.X., Li S.H., Evans J. et al. Huntingtin inclusions do not deplete polyglutamine-containing transcription factors in HD mice. Hum Mol Genet 2002;11(8):905–14. doi: 10.1093/hmg/11.8.905
- Shimohata T., Nakajima T., Yamada M. et al. Expanded polyglutamine stretches interact with TAFII130, interfering with CREB-dependent transcription. Nat Genet 2000;26(1):29–36. doi: 10.1038/79111
- Dunah A.W., Jeong H., Griffin A. et al. Sp1 and TAFII130 transcriptional activity disrupted in early Huntington’s disease. Science 2002;296(5576):2238–43. doi: 10.1126/science.1072613
- Nucifora F.C. Jr, Ellerby L.M., Wellington C.L. et al. Polyglutamine-expanded huntingtin activates the JNK3 pathway and causes striatal degeneration in mice. J Biol Chem 2003;278(14):13047–55. doi: 10.1074/jbc.M210307200
- Li S.H., Cheng A.L., Zhou H. et al. Interaction of Huntington disease protein with transcriptional activator Sp1. Mol Cell Biol 2002;22(5):1277–87. doi: 10.1128/MCB.22.5.1277-1287.2002
- Gunawardena S., Her L.S., Brusch R.G. et al. Disruption of axonal transport by loss of huntingtin or expression of pathogenic polyQ proteins in Drosophila. Neuron 2003;40(1):25–40. doi: 10.1016/S0896-6273(03)00594-8
- Li S.H., Li X.J. Huntingtin and its role in neuronal degeneration. Neuroscientist 2004;10(5):467–75. doi: 10.1177/1073858404263520
- Gutekunst C.A., Li S.H., Yi H. et al. Nuclear and neuropil aggregates in Huntington’s disease: relationship to neuropathology. J Neurosci 1999;19(7):2522–34. doi: 10.1523/JNEUROSCI.19-07-02522.1999
- Morfini G., Pigino G., Brady S.T. Polyglutamine expansion diseases: failing to deliver. Trends Mol Med 2005;11(2):64–70. doi: 10.1016/j.molmed.2004.12.002
- Morfini G.A., You Y.M., Pollema S.L. et al. Pathogenic huntingtin inhibits fast axonal transport by activating JNK3 and phosphorylating kinesin. Nat Neurosci 2009;12(7):864–71. doi: 10.1038/nn.2346
- Crespo-Barreto J., Fryer J.D., Shaw C.A. et al. Partial loss of Ataxin-1 function contributes to transcriptional dysregulation in spinocerebellar ataxia type 1 pathogenesis. PLoS Genet 2010;6(7):e1001021. doi: 10.1371/journal.pgen.1001021
- Bennett E.J., Shaler T.A., Woodman B. et al. Global changes to the ubiquitin system in Huntington’s disease. Nature 2007;448(7154):704–8. doi: 10.1038/nature06022
- Venkatraman P., Wetzel R., Tanaka M. et al. Eukaryotic proteasomes cannot digest polyglutamine sequences and release them during degradation of polyglutamine-containing proteins. Mol Cell 2004;14(1):95–104. doi: 10.1016/S1097-2765(04)00151-0
- Matsuyama Z., Yanagisawa N., Yamada M. et al. Polyglutamine repeats of spinocerebellar ataxia 6 impair the cell-death-preventing effect of CaV2.1 Ca2+ channel – loss-of-function cellular model of SCA6. Neurobiol Dis 2004;17(1):198–204. doi: 10.1016/j.nbd.2004.07.001
- Kumaran D., Balagopal V., Thomas M. et al. Genetic characterization of spinocerebellar ataxia 1 in a South Indian cohort. BMC Med Genet 2014;15:114. doi: 10.1186/s12881-014-0114-4
- Nardacchione A., Orsi L., Brusco A. et al. Definition of the smallest pathological CAG expansion in SCA7. Clin Genet 1999;56(3): 232–4. doi: 10.1034/j.1399-0004.1999.560310.x
- Van de Warrenburg B.P., Frenken C.W., Ausems M.G. et al. Striking anticipation in spinocerebellar ataxia type 7: the infantile phenotype. J Neurol 2001;248(10):911–4. doi: 10.1007/s004150170065
- Michalik A., Martin J.J., Van Broeckhoven C. Spinocerebellar ataxia type 7 associated with pigmentary retinal dystrophy. Eur J Hum Genet 2004;12(1):2–15. doi: 10.1038/sj.ejhg.5201089
- Choudhry S., Mukerji M., Srivastava A.K. et al. CAG repeat instability at SCA2 locus: anchoring CAA interruptions and linked single nucleotide polymorphisms. Hum Mol Genet 2001;10(23):2437–46. doi: 10.1093/hmg/10.23.2437
- Chong S.S., McCall A.E., Cota J. et al. Gametic and somatic tissue-specific heterogeneity of the expanded SCA1 CAG repeat in spinocerebellar ataxia type 1. Nat Genet 1995;10(3):344–50. doi: 10.1038/ng0795-344
- Chung M.Y., Ranum L.P., Duvick L.A. et al. Evidence for a mechanism predisposing to intergenerational CAG repeat instability in spinocerebellar ataxia type 1. Nat Genet 1993;5(3):254–8. doi: 10.1038/ng1193-254
- Soczak K., Krzyzosiak W.J. Imperfect CAG repeats are common in human genes: implications for polyglutamine diseases. Nucleic Acids Res 2005;33(13):4425–32. doi: 10.1093/nar/gki733
- Mor-Shaked H., Eiges R. Reevaluation of FMR1 hypermethylation timing in fragile X syndrome. Front Mol Neurosci 2018;11:31. doi: 10.3389/fnmol.2018.00031
- Illarioshkin S.N., Ivanova-Smolenskaya I.A., Markova E.D. DNA diagnostics and medical genetic counseling in neurology. Moscow: Meditsinskoe informatsionnoe agentstvo, 2002. 591 p. (In Russ.).
- Doyu M., Sobue G., Mukai E. et al. Severity of X-linked recessive bulbospinal neuronopathy correlates with size of the tandem CAG repeat in androgen receptor gene. Ann Neurol 1992;32(6):707–10. doi: 10.1002/ana.410320603
- Kawaguchi Y., Okamoto T., Taniwaki M. et al. CAG expansions in a novel gene for Machado–Joseph disease at chromosome 14q32.1. Nat Genet 1994;8(3):221–8. doi: 10.1038/ng1194-221
- Gardiner S.L., Boogaard M.W., Trompet S. et al. Prevalence of carriers of intermediate and pathological polyglutamine disease-associated alleles among large population-based cohorts. JAMA Neurol 2019;76:650–6.
- Perez B.A., Shorrock H.K., Banez-Coronel M. et al. CCG•CGG interruptions in high-penetrance SCA8 families increase RAN translation and protein toxicity. EMBO Mol Med 2021;13(11):e14095. doi: 10.15252/emmm.20211409
- Klyushnikov S.A., Illarioshkin S.N., Abramova A.A. et al. Clinical and genetic analysis of hereditary ataxias: new disease forms in Russian families. Nevrologicheskiy zhurnal = Neurological Journal 2022;27(4):14–21. (In Russ.). doi: 10.24412/2226-079X-2022-12443
- Fedorov A.I., Sukhomyasova A.L., Golikova P.I. et al. Prevalence of spinocerebellar ataxia type 1 in Yakutia: current state. Meditsinskaya genetika = Medical Genetics 2020;19(7):29–30. (In Russ.).
- Goldfarb L.G., Platonov F.A. Genetic identification, clinical features and distribution of spinocerebellar ataxia type 1 in the Republic of Sakha (Yakutia). Sibirskiye issledovaniya = Siberian Studies 2019;2(2):12–25. (In Russ.). doi: 10.33384/26587270.2019.02.002r
- I D.V. Autosomal dominant spinocerebellar ataxias in Khabarovsk Krai: population, clinical-genealogical and molecular-genetic analysis. Ph. D. dissertation summary. Moscow, 2017. (In Russ.).
- Nuzhnyi E.P., Abramysheva N.Yu., Chkhartishvili I.A. et al. Spinocerebellar ataxia type 8 in Russian patients. Zhurnal nevrologii i psikhiiatrii im. S.S. Korsakova = Journal of Neurology and Psychiatry named after S.S. Korsakov 2022;122(8):106–11. (In Russ.).
- Koob M.D., Moseley M.L., Schut L.J. et al. An untranslated CTG expansion causes a novel form of spinocerebellar ataxia (SCA8). Nat Genet 1999;21(4):379–84. doi: 10.1038/7710
- Perlman S.L. Evaluation and Management of Ataxic Disorders: An Overview for Physicians. National Ataxia Foundation, 2016. Available at: https://www.ataxia.org/wp-content/uploads/2022/05/Evaluation-and-Management-2016-edition.pdf.
- Dos Santos Pinheiro J., Sena L.S., Donis K.C. et al. Diagnostic delay of hereditary ataxias in brazil: the case of Machado–Joseph disease. Cerebellum 2023;22(3):348–54. doi: 10.1007/s12311-022-01404-5
- Chena Y.-S., Hua T.-M., Wang Y.-Y., Wu C.-L. A case of Huntington’s disease presenting with psychotic symptoms and rapid cognitive decline in the early stage. Eur J Psychiatry 2022;36(1):65, 66. doi: 10.1016/j.ejpsy.2021.06.001
- Morozov I.I., Emelyanov Yu.V. A clinical case of Huntington’s disease in psychiatric practice. Zdravookhranenie Yugry: opyt i innovatsii = Health Care of Ugra: Experience and Innovations 2017;3:62–5. (In Russ.).
- Lee W.Y., Jin D.K., Oh M.R. et al. Frequency analysis and clinical characterization of spinocerebellar ataxia types 1, 2, 3, 6, and 7 in Korean patients. Arch Neurol 2003;60(6):858–63. doi: 10.1001/archneur.60.6.858
- Roda R.H., Schindler A.B., Blackstone C. SCA8 should not be tested in isolation for ataxia. Neurol Genet 2017;3(3):e150. doi: 10.1212/NXG.0000000000000150
- Sulek A., Hoffman-Zacharska D., Zdzienicka E., Zaremba J. SCA8 repeat expansion coexists with SCA1 – not only with SCA6. Am J Hum Genet 2003;73(4):972–4. doi: 10.1086/378524
- Izumi Y., Maruyama H., Oda M. et al. SCA8 repeat expansion: large CTA/CTG repeat alleles are more common in ataxic patients, including those with SCA6. Am J Hum Genet 2003;72(3):704–9. doi: 10.1086/367775
- Juvonen V., Hietala M., Päivärinta M. et al. Clinical and genetic findings in Finnish ataxia patients with the spinocerebellar ataxia 8 repeat expansion. Ann Neurol 2000;48(3):354–61.
- Mingazova E.Z. Clinical-epidemiological and molecular-genetic study of progressive spinocerebellar ataxias in the Republic of Bashkortostan. Ph. D. dissertation summary. Moscow, 2009. 115 p. (In Russ.).
- Durr A. Autosomal dominant cerebellar ataxias: polyglutamine expansions and beyond. Lancet Neurol 2010;9(9):885–94. doi: 10.1016/S1474-4422(10)70183-6
- Bettencourt C., Santos C., Kay T. et al. Analysis of segregation patterns in Machado–Joseph disease pedigrees. J Hum Genet 2008;53(10):920–3. doi: 10.1007/s10038-008-0330-y
- Schöls L., Bauer P., Schmidt T. et al. Autosomal dominant cerebellar ataxias: clinical features, genetics, and pathogenesis. Lancet Neurol 2004;3(5):291–304. doi: 10.1016/S1474-4422(04)00737-9
- Hekman K.E., Gomez C.M. The autosomal dominant spinocerebellar ataxias: emerging mechanistic themes suggest pervasive Purkinje cell vulnerability. J Neurol Neurosurg Psychiatry 2015;86(5):554–61. doi: 10.1136/jnnp-2014-308421
- Nethisinghe S., Pigazzini M.L., Pemble S. et al. PolyQ tract toxicity in SCA1 is length dependent in the absence of CAG repeat interruption. Front Cell Neurosci 2018;12:200. doi: 10.3389/fncel.2018.00200
- Giunti P., Sabbadini G., Sweeney M.G. et al. The role of the SCA2 trinucleotide repeat expansion in 89 autosomal dominant cerebellar ataxia families: frequency, clinical and genetic correlates. Brain 1998;121(Pt 3):459–67. doi: 10.1093/brain/121.3.459
- Stevanin G., Cassa E., Cancel G. et al. Characterisation of the unstable expanded CAG repeat in the MJD1 gene in four Brazilian families of Portuguese descent with Machado–Joseph disease. J Med Genet 1995;32(10):827–30. doi: 10.1136/jmg.32.10.827
- González-Zaldívar Y., Vázquez-Mojena Y., Laffita-Mesa J.M. et al. Epidemiological, clinical, and molecular characterization of Cuban families with spinocerebellar ataxia type 3/Machado–Joseph disease. Cerebellum Ataxias 2015;2:1. doi: 10.1186/s40673-015-0020-4
- Ranum L.P., Chung M.Y., Banfi S. et al. Molecular and clinical correlations in spinocerebellar ataxia type I: evidence for familial effects on the age at onset. Am J Hum Genet 1994;55(2):244–52.
Supplementary files




