Лазерная конфокальная микроскопия нервных волокон роговицы у пациентов с синдромом жжения глаз и синдромом сухого глаза

Введение. Избыточное испарение слезной пленки может приводить к повреждению нервных волокон роговицы и обусловливать возникновение хронической невропатической боли, имитирующей сухость. Лазерная конфокальная микроскопия роговицы позволяет зафиксировать морфологические изменения нервных волокон роговицы и может быть использована в качестве диагностического инструмента для поиска субстрата невропатической боли.

Цель исследования – изучение и сравнительная оценка структурных изменений нервных волокон роговицы у пациентов с синдромом жжения глаз и синдромом сухого глаза методом лазерной конфокальной микроскопии.

Материалы и методы. Oбследовано 54 пациента (108 глаз) в возрасте 20–35 лет: 17 пациентов (34 глаза) с верифицированным диагнозом синдрома сухого глаза легкой и средней степени тяжести составляли 1‑ю группу, 17 пациентов (34 глаза) с синдромом жжения глаз – 2‑ю группу. Третью (контрольную) группу составили 20 добровольцев (40 глаз) аналогичного возраста, у которых не было выявлено каких‑либо соматических и глазных заболеваний. Критерием исключения из исследования служило наличие клинических признаков блефарита и дисфункции мейбомиевых желез. У всех пациентов определяли количество мигательных движений и полноту смыкания век, выполняли пробу Норна, тест Ширмера I. Для объективной оценки нервных волокон роговицы применяли лазерную конфокальную микроскопию роговицы на приборе Heidelberg Retina Tomograph III с роговичным модулем.

Результаты. Самые низкие значения коэффициента анизотропии направленности нервных волокон роговицы зафиксированы в группе пациентов с синдромом жжения глаз (2,605), что свидетельствует о наибольших изменениях структуры нервного волокна. Достоверной отрицательной корреляционной связи в группе пациентов с синдромом жжения глаз между значением пробы Норна, количеством мигательных движений, а также значением коэффициента анизотропии направленности нервных волокон роговицы выявлено не было (r = –0,45, p = 0,07 и r = –0,45, p = 0,07). Установлено статистически достоверное (p >0,05) увеличение количества воспалительных клеток Лангерганса, длины и плотности их отростков в группах пациентов с синдромом жжения глаз и синдромом сухого глаза по сравнению с группой здоровых добровольцев.

Выводы. Метод лазерной конфокальной микроскопии роговицы может быть применен для выявления изменений нервных волокон роговицы, связанных с возникновением невропатического болевого синдрома.

1. Rosenthal P., Borsook D. Ocular neuropathic pain. Br J Ophthalmol 2016;100(1):128–34. DOI: 10.1136/bjophthalmol-2014-306280

2. Galor A., Moein H.R., Lee C. et al. Neuropathic pain and dry eye. Ocul Surf 2018;16:31–44. DOI: 10.1016/j.jtos.2017.10.001

3. Kalangara J.P., Galor A., Levitt R.C. et al. Characteristics of ocular pain complaints in patients with idiopathic dry eye symptoms. Eye Contact Lens 2017;43:192–8. DOI: 10.1097/ICL.0000000000000249

4. Vehof J., Sillevis Smitt-Kamminga N., Kozareva D. et al. Clinical characteristics of dry eye patients with chronic pain syndromes. Am J Ophthalmol 2016;166:203–4. DOI: 10.1016/j.ajo.2016.03.023

5. Schuster A.K., Wettstein M., Gerhardt A. et. al. Eye pain and dry eye in patients with fibromyalgia. Pain Med 2018;19:2528–35. DOI: 10.1093/pm/pny045

6. Methodologies to diagnose and monitor dry eye disease: Report of the Diagnostic Methodology Subcommittee of the International Dry Eye WorkShop (2007). Ocul Surf 2007;5(2):108–52. DOI:10.1016/s1542-0124(12)70083-6

7. Mastropasqua L., Nubile M., Lanzini M. et al. Epithelial dendritic cell distribution in normal and inflamed human cornea: In vivo confocal microscopy study. Am J Ophthalmol 2006;142(5):736-744. DOI:10.1016/j.ajo.2006.06.057

8. Bayguinov P.O., Oakley D.M., Shih C.C. et al. Modern laser scanning confocal microscopy. Curr Protoc Cytom 2018;85(1):39. DOI: 10.1002/cpcy.39

9. Сурнина З.В., Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете. Вестник офтальмологии 2015;131(4):5–14. DOI: 10.17116/oftalma201513145-14

10. Ganesh Kumar N., Kung T.A. Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment and prevention of neuromas and neuroma pain. Hand Clin 2021;37(3):361–71. DOI: 10.1016/j.hcl.2021.05.003

11. Chinnery H.R., Rajan R., Jiao H. et al. Identification of presumed corneal neuromas and microneuromas using laser-scanning in vivo confocal microscopy: A systematic review. Br J Ophthalmol 2021;10:1136. DOI: 10.1136/bjophthalmol-2020-318156

12. Guerrero-Moreno A., Liang H., Moreau N. et al. Corneal nerve abnormalities in painful dry eye disease patients. Biomedicines 2021;9(10):1424. DOI: 10.3390/biomedicines9101424

13. Bouhassira D., Wilhelm S., Schacht A. et al. Neuropathic pain phenotyping as a predictor of treatment response in painful diabetic neuropathy: Data from the randomized, double-blind, COMBO-DN study. Pain 2014;155:2171–9. DOI: 10.1016/j.pain.2014.08.020

14. Vollert J., Maier C., Attal N. et al. Stratifying patients with peripheral neuropathic pain based on sensory profiles: Algorithm and sample size recommendations. Pain 2017;158:1446–55. DOI: 10.1097/j.pain.0000000000000935

15. Stettner M., Hinrichs L., Guthoff R. et al. Corneal confocal microscopy in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Ann Clin Transl Neurol 2015;3(2):88–100. DOI:10.1002/acn3.275